2024年3月29日发(作者:)
放射性小鼠肺纤维化基因表达谱生物信息学动态分析
邹观莲; 陈娟; 王艳阳; 赵仁
【期刊名称】《《宁夏医科大学学报》》
【年(卷),期】2019(041)006
【总页数】7页(P577-583)
【关键词】放射性肺纤维化; 基因芯片; 生物信息学分析; 差异表达基因; 时间点
【作 者】邹观莲; 陈娟; 王艳阳; 赵仁
【作者单位】宁夏医科大学研究生院 银川750004; 宁夏医科大学总医院呼吸与危
重症医学科 银川750004; 宁夏医科大学总医院肿瘤医院放疗科 银川750004
【正文语种】中 文
【中图分类】R730.55
放射治疗是肺癌、食管癌、乳腺癌、淋巴瘤等胸部肿瘤最重要的治疗方式之一。放
射性肺纤维化(RILF)是胸部放疗引起的放射性损害,会影响放疗的有效实施、导
致胸部放疗疗效下降[1]。虽然学者们已对RILF进行了深入的研究,其具体分子机
制尚不完全清楚[2-3]。芯片技术与生物信息学分析相结合,为探索RILF进展涉及
的差异表达基因和相关通路提供了强有力的工具[4-5]。同时,我们从公共数据库
中下载RILF的基因表达数据,如 GEO[6]和 Array Express Archive 数据库[7],
并使用更多的生物信息学方法对这些数据进行综合分析。但是,大多数可用的芯片
数据都是在一个时间点测定的。事实上,RILF的基因表达谱是随着时间的推移而
变化的,不同病程的RILF表现出不同的基因表达谱[8]。因此,有必要对RILF形
成过程中不同时间点基因表达谱的特征进行深入探索。为了了解RILF形成过程中
不同时间点基因表达谱的特征,本研究对包含小鼠RILF基因时间序列表达谱的
GDS4822数据集进行了生物信息学分析[9]。
1 材料与方法
1.1 数据收集
GDS4822[9]基因表达谱数据集来源于美国国家生物技术信息中心(NCBI)GEO
数据库(/geo/)。 对 10 周 龄 雌 性C57Bl/Ncr
小鼠,使用X-RAD 320型X射线照射仪进行胸部照射,剂量率为2.61Gy·min-1。
设置照射后 2、4、8、16、30 周 5 个检测时间点,每个时间点分别行0、5、
17.5 Gy剂量照射。每个组设置3个重复,共可以获取45个肺组织样本。对每个
肺组织样本提取RNA,采用Affymetrix Mouse 430_2芯片分析。本研究主要分
析放射性肺纤维化形成过程中的基因变化特点,所以仅分析0和17.5 Gy照射组
的芯片数据[9]。
1.2 数据处理
利用GEO2R(/geo/geo2r/)分析筛选不同时间
点RILF与对照组间的差异表达基因。P值采用Benjamini-Hochberg方法进行矫
正[10],logFC表示RILF的差异基因相对于对照组的差值倍数。以P<0.01和
|logFC|>0.5做为差异基因的筛选标准[11]。
1.3 KEGG通路分析
KEGG为一个整合了基因组、化学及系统功能信息的数据库,将从完整测序的基因
组中得到的基因与细胞、物种与生态系统水平的系统功能关联起来。在注释、可视
化和整合发现(DAVID)数据库中[12],通过KEGG基因通路富集分析探讨已鉴
定的差异表达基因DEGs在RILF发生和进展中的意义。以P<0.05为差异有统计
学意义。
1.4 蛋白-蛋白相互作用(PPI)网络构建
STRING数据库是检索基因/蛋白质相互作用的搜索工具[13],用于获取和预测蛋
白互作网络数据。为了构建由上调或下调DEGs编码的每个蛋白序列的互作网络,
将DEGs序列导入STRING数据库中,以综合评分>0.4为标准。使用cytoscape
软件研究这些基因之间的相互作用,揭示调控网络中的枢纽节点[14]。以节点自由
度≥10作为筛选关键基因的标准[15]。
2 结果
2.1 DEGs的筛选
照射后 2、4、8、16 和 30 周共 279、396、870、161、54 DEGs上调,223、
343、507、204、338 DEGs在不同时间点下调。见图1。
2.2 DEG的功能富集分析
为了进一步了解DEGs的功能,我们还进行了 KEGG 通路富集分析(表 1、表
2)。在 2、4、8、16及30周,发现上调的DEGs主要在泛素介导的蛋白质水解、
造血通路、昼夜节律、细胞因子受体相互作用等通路显著富集。在下调的DEGs
中,不同时间点富集的通路主要为cGMP-PKG信号通路、细胞外基质受体相互作
用、唾液分泌和肿瘤等相关通路。
图1 不同时间点差异表达基因的火山图
表1 RILF表达上调基因的KEGG通路富集分析信号通路 基因数目筛选到基因占背
景基因的百分比/%P值 基因名称2周mmu04120:Ubiquitin mediated
proteolysis 9 2.37 0.000855 UBE2D2A、XIAP、UBE3A、BIRC6、CDC20、
ITCH、UBE2C、UBE2B、TRIP12 mmu05203:Viral carcinogenesis 11 2.89
0.0015 YWHAZ、IL6ST、CCND2、UBE3A、BAX、IRF7、CDC20、H2T24、
EIF2AK2、CCNA2、ATF2 mmu05140:Leishmaniasis 6 1.58 0.0020
MAP3K7、PTPN6、IL1B、STAT1、ITGAM、H2-DMB2 mmu05164:
Influenza A 9 2.37 0.0027 TNFSF10、IRF7、IL1B、RSAD2、STAT1、EIF2AK2、
H2-DMB2、ATF2、CXCL10 mmu05162:Measles 8 2.11 0.0030 MAP3K7、
TNFSF10、SH2D1A、CCND2、IRF7、IL1B、STAT1、EIF2AK2 4周
mmu04640:Hematopoietic cell lineage 1 2.43 0.000016 IL1R2、GP5、
GP1BB、CD33、IL1B、CSF3R、GP1BA、ITGAM、CD14、ITGA2B、GP9
mmu04060:Cytokine-cytokine receptor interaction 17 3.76 0.000114
IL1R2、CCL2、CSF2RB2、CCR1、CCL8、EDA2R、TNFSF14、CXCR2、PF4、
CCL7、PPBP、CCR2、IL1RAP、IL1B、CSF3R、CSF2RB、IL22RA2
续表信号通路 基因数目筛选到基因占背景基因的百分比/%P值 基因名称
mmu05133:Pertussis 9 1.99 0.000231 IRAK4、C1QA、FOS、C1QB、
GNAI3、IL1B、C1QC、ITGAM、CD14 mmu04062:Chemokine signaling
pathway 14 3.09 0.000437 CXCL1、GNAI3、CCL2、PPBP、NCF1、CCR1、
CCR2、CXCL2、CCL9、CCL8、PF4、CXCR2、CCL7、CCL6 mmu05020:
Prion diseases 6 1.32 0.000657 C1QA、C1QB、BAX、IL1B、STIP1、C1QC 8
周mmu04640:Hematopoietic cell lineage 22 2.39 1.66×10-11IL1R2、
IL4RA、ITGA4、ITGB3、KITL、CD24A、ITGAM、GP9、GP5、CD37、CD44、
TFRC、ITGA5、GP1BB、CD33、IL1B、CSF3R、CD22、GP1BA、CSF2RA、
CD14、ITGA2B mmu04380:Osteoclast differentiation 25 2.72 2.73×10-
10FOSL2、NCF2、NCF1、SOCS3、NCF4、TGFBR2、PIK3CD、SPI1、FCGR4、
ITGB3、SIRPA、TGFB1、FCGR3、PIRB、SIRPB1A、FOS、CYBB、MAPK14、
IL1B、IKBKB、TRAF6、AKT3、SYK、TYROBP、LCP2 mmu05140:
Leishmaniasis 17 1.85 4.58×10-9 PTPN6、PTGS2、NCF2、NCF1、NCF4、
FCGR4、ITGB2、ITGA4、ITGAM、TGFB1、FCGR3、IRAK4、FOS、ITGB2L、
MAPK14、IL1B、TRAF6 mmu04670:Leukocyte transendothelial migration
20 2.18 5.14×10-7 ITGAL、NCF2、NCF1、NCF4、MMP9、PIK3CD、ACTN1、
ITGB2、ITGA4、CXCL12、ITGAM、CDH5、PRKCB、ITGB2L、RASSF5、
CYBB、RAC2、PTK2B、MAPK14、JAM2 mmu04010:MAPK signaling
pathway 29 3.16 1.95×10-6 IL1R2、FGFR3、MAP4K2、MKNK1、HSPA1A、
HSPA1B、TGFB1、FOS、RAC2、RASGRP4、MAP3K8、RASGRP2、IL1B、
TRAF6、AKT3、TRP53、TGFBR2、FLNB、PRKCB、RPS6KA3、CRKL、ARRB2、
MAPK14、NTRK2、MAPK8IP3、HSPB1、IKBKB、CACNA1D、CD14 16周
mmu04710:Circadian rhythm mmu04060:Cytokine-cytokine receptor
interaction mmu04640:Hematopoietic cell lineage mmu05020:Prion
diseases mmu04390:Hippo signaling pathway mmu04060:Cytokine-
cytokine receptor interaction mmu04640:Hematopoietic cell lineage
mmu05020:Prion diseases mmu04390:Hippo signaling pathway 30周
mmu04060:Cytokine-cytokine receptor interaction 5 2.48 0.000101
NR1D1、PER2、PER3、BHLHE40、BHLHE41 9 4.46 0.000705 CCL11、LIF、
TSLP、VEGFD、IL1B、CSF3R、EDA2R、CCL7、IL1A 5 2.48 0.004506
FCER2A、GP1BB、IL1B、CSF3R、IL1A 3 1.48 0.02697 EGR1、IL1B、IL1A 5
2.48 0.032699 AJUBA、BMP4、PARD6B、CCND1、ID2 4 6.10 0.031145
CXCL9、CCL8、EDA2R、IL7R 5 2.48 0.004506 FCER2A、GP1BB、IL1B、
CSF3R、IL1A 3 1.48 0.02697 EGR1、IL1B、IL1A 5 2.48 0.032699 AJUBA、
BMP4、PARD6B、CCND1、ID2 4 6.10 0.031145 CXCL9、CCL8、EDA2R、
IL7R
表2 RILF表达下调基因的KEGG通路富集分析信号通路 基因 P值 基因名称数目
率/%2周mmu04022:cGMP-PKG signaling pathway 9 2.73 0.0007 ATP2B1、
MEF2C、MAPK1、PDE5A、PDE3B、ATP1A1、CREB5、PDE3A、PRKG1
mmu04915:Estrogen signaling pathway mmu04713:Circadian
entrainment mmu04024:cAMP signaling pathway mmu04261:
Adrenergic signaling in cardiomyocytes 7 2.12 0.00084 MAPK1、FKBP5、
CREB5、HSPA1A、HSPA1B、KCNJ3、HSPA8 6 1.820.005078 MAPK1、
PER2、RYR2、PER1、PRKG1、KCNJ3 8 2.43 0.007032 ATP2B1、MAPK1、
CREBBP、PDE3B、RYR2、ATP1A1、CREB5、PDE3A 7 2.12 0.007134
ATP2B1、TNNT2、MAPK1、RYR2、ATP1A1、CREB5、MYH6 4周
mmu04512:ECM-receptor interaction 13 2.787.87×10-9COL4A4、TNC、
COL3A1、DAG1、ITGA1、SDC4、COL5A2、COL5A1、CHAD、ITGB6、
COL6A3、COL1A2、COL1A1 mmu04151:PI3K-Akt signaling pathway 21
4.493.29×10-7COL4A4、PDGFB、EFNA1、TNC、COL3A1、ITGA1、IGF1、
COL5A2、COL5A1、KDR、CHAD、IGF1R、CCND2、ITGB6、COL6A3、
COL1A2、CREB3L1、GNG2、PPP2R5E、COL1A1、ANGPT2 mmu04510:
Focal adhesion 16 3.425.67×10-7COL4A4、PDGFB、TNC、COL3A1、ITGA1、
IGF1、COL5A2、COL5A1、KDR、CHAD、IGF1R、CCND2、ITGB6、COL6A3、
COL1A2、COL1A1 mmu04974:Protein digestion and absorption 9 1.92
0.00057 COL4A4、COL3A1、COL6A3、ELN、COL1A2、COL15A1、COL1A1、
COL5A2、COL5A1 mmu05146:Amoebiasis 9 1.92 0.000423 COL4A4、
GNA14、COL3A1、COL1A2、COL1A1、PLCB1、COL5A2、COL5A1、TGFB2
8周mmu04512:ECM-receptor interaction 14 1.881.09×10-7COL4A3、
NPNT、TNC、COL3A1、VTN、SDC4、COL5A2、COL5A1、COL4A6、
COL4A5、SDC1、ITGB6、COL6A2、COL1A2 mmu04110:Cell cycle 16
2.151.71×10-7CDK1、CDC6、SKP2、CDC20、CDK7、MCM2、MCM4、
WEE1、MCM5、TGFB2、MCM6、CCNE2、CCND1、MAD2L1、CCND2、
BUB1B mmu04974:Protein digestion and absorption 13 1.758.33×10-
7COL4A3、COL14A1、COL3A1、ACE2、COL1A2、COL6A2、COL12A1、
ATP1A2、CPB1、COL5A2、COL4A6、COL5A1、COL4A5 mmu04514:Cell
adhesion molecules(CAMs)15 2.020.000245 NRCAM、H2-Q2、CLDN8、
ALCAM、VCAM1、SDC1、CADM1、CLDN1、H2-AA、NECTIN3、CDH2、
SDC4、H2-DMA、NEGR1、SDC2 mmu04151:PI3K-Akt signaling pathway
22 2.96 0.000067 COL4A3、TNC、COL3A1、LPAR4、IGF1、VTN、CREB5、
FGF13、COL5A2、COL4A6、COL5A1、BRCA1、COL4A5、CCNE2、CCND1、
CCND2、ITGB6、COL6A2、COL1A2、PDGFC、ANGPT2、PPP2R2C 16周
mmu04970:Salivary secretion mmu04713:Circadian entrainment
mmu04915:Estrogen signaling pathway mmu04921:Oxytocin signaling
pathway mmu04210:Apoptosis 30周mmu05200:Pathways in cancer 5
1.95 0.006824 CD38、ADRB2、PLCB4、ADCY8、PLCB1 5 1.95 0.015611
PLCB4、ADCY8、PLCB1、KCNJ3、RASD1 5 1.95 0.015611 PLCB4、ADCY8、
PLCB1、KCNJ3、HSPA8 6 2.34 0.019421 CD38、CDKN1A、PLCB4、ADCY8、
PLCB1、KCNJ3 4 1.56 0.021008 CSF2RB2、NFKBIA、CSF2RB、FAS 12
2.650.018675 BMP4、E2F3、ADCY7、MSH3、CXCR4、BCL2、ARAF、
RUNX1T1、RUNX1T1、PDGFRB、KIT、STK4、FN1
续表信号通路 基因 P值 基因名称数目 率/%mmu04010:MAPK signaling
pathway 9 1.99 0.021585 DUSP5、MAP4K4、CACNA2D1、DUSP16、IL1B、
PDGFRB、NR4A1、STK4、CDC25B mmu04640:Hematopoietic cell
lineage mmu04925:Aldosterone synthesis and secretion mmu05215:
Prostate cancer 5 1.10 0.027199 FCER2A、IL1B、CD22、KIT、ITGAM 5
1.100.029329 ADCY7、NR4A2、NR4A1、CREB5、CAMK1D 5 1.10 0.031557
E2F3、BCL2、ARAF、PDGFRB、CREB5
2.3 PPI网络分析与核心基因筛选
通过PPI网络,本研究在不同时间点筛选到了不同数量的关键基因,其中第8周
这个时间点筛选到的关键基因数目最多,共196个关键基因。其中,139个属于
上调表达,57个属于下调表达。随后的基因功能分析显示:第8周上调表达的关
键基因主要在免疫调节、防御反应及细胞活化过程中发挥作用。下调的关键基因主
要在细胞周期、细胞分裂及染色体分离过程中发挥作用。
图2 不同时间点基因芯片数据中筛选到的关键基因数目
3 讨论
RILF的发生是一个多步骤、多阶段的过程,发生时间较长。不同时间点RILF的基
因表达谱特征对于RILF的诊断及治疗至关重要。目前,临床上针对RILF的治疗手
段较为单一,不能随时间变化和疾病转归进行及时调整,归根结底主要是受制于对
RILF发生过程中不同基因表达和关键分子生物学事件认识的不足[16]。对RILF发
生过程中不同时间点基因表达谱的分析,有助于了解RILF的发生机制,开发有针
对性的RILF诊断标记物,并为RILF的个体化治疗提供数据支撑。
本研究使用时间序列芯片数据来分析照射后2、4、8、16及30周小鼠肺组织照
射后的基因表达谱。每个时间点的DEGs不同。然而,在照射后4周和8周发现
了更多的DEGs,意味着这些时间点在RILF进程中至关重要。KEGG通路分析中
发现泛素介导的蛋白水解、造血细胞系、细胞因子受体相互作用、cGMP-PKG信
号通路、细胞外基质受体相互作用等通路参与到RILF的发生、发展。这些结果将
一些重要生物学过程与RILF的发展之间建立了联系,为进一步的研究提供了线索。
随后的关键基因分析发现:第8周这个时间点筛选到的关键基因数目最多,共
196个关键基因。其中,139个属于上调表达,57个属于下调表达。随后的基因
功能分析显示:第8周上调表达的关键基因主要在免疫调节、防御反应及细胞活
化过程中发挥作用。下调的关键基因主要在细胞周期、细胞分裂及染色体分离过程
中发挥作用。辐射可以刺激肿瘤和非肿瘤微环境中的免疫活性。首先,辐射通过启
动淋巴细胞浸润,特别是T细胞的募集来激活炎症和免疫。在一系列纤维化疾病
模型中,IL-4和IL-13等2型T细胞因子通过激活成纤维细胞增殖和胶原生成来
增强纤维化过程,而1型T细胞因子则抑制这些过程[17]。其次,研究发现M2
巨噬细胞被在RILF形成中发挥重要作用。在受照射的肺组织中,GATA-3的表达
上调了交替活化的巨噬细胞(M2巨噬细胞),M2巨噬细胞和转化生长因子-β信
号通路的过度激活参与了RILF的形成[18]。另外,也有多项研究报道[15-16]辐射
后炎症细胞因子在体内的分泌。受辐射的细胞在体内产生的炎性细胞因子既诱导机
体的免疫反应又参与了RILF的形成[19]。所以,免疫调节在RILF形成中的重要作
用不言而喻。作为RILF形成的关键时间点,免疫调节发挥了重要作用,这也提示
这一时间点的治疗干预应围绕免疫调节展开。细胞周期在调控损伤后细胞增殖方面
具有重要的作用。细胞周期调控改变是RILF发生过程中的重要分子生物学事件
[20]。本研究在分析关键基因时也发现,在第8周这个时间点筛选到的下调关键基
因,其主要功能集中在细胞周期的调控。这也提示以后有关RILF发生机制的研究
需要重点关注细胞周期的变化,尤其在第8周这个时间点。
综上所述,放射对小鼠肺脏基因表达谱影响具有时效性,可促进对RILF发生病理
生理机制的认识。8周是RILF发病机制的关键时期,对该时期识别的DEGs和通
路进行更深入的研究,可能对未来研发有价值的RILF治疗方法具有重要意义。
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