2024年4月20日发(作者:)
DNA损伤检验点ATM—chk2通路影响衰老的作用机制分析
目的 分析DNA损伤检验点ATM-chk2通路对影响衰老的作用机制。 方法
选择SD大鼠4个月龄、12个月龄、20个月龄和28个月龄各10只,分别取4
个月龄、12个月龄、20个月龄和28个月龄大鼠的骨髓组织进行ATM-chk2通路
的观察,并对结果进行分析。 结果 4个月龄、12个月龄、20个月龄和28个月
龄SD大鼠的ATM基因表达随着月龄增加,呈逐渐下降趋势,不同月龄大鼠间
比较,差异具有显著性(P < 0.05);ATM-chk2通路基因蛋白表达呈逐渐上升趋
势,组间比较差异具有显著性(P < 0.05)。 结论 ATM基因表达及ATM-chk2
通路基因蛋白表达水平和大鼠月龄直接相关,年龄越大ATM基因表达日渐降低,
ATM-chk2通路基因蛋白表达呈逐渐上升趋势。
标签: DNA损伤检验点;ATM-chk2通路;衰老
本研究在前期工作基础上观察老年小鼠DNA损伤检验点ATM-chk2通路的
基因表达变化及淫羊藿苷提取液的干预作用,并进一步通过实验观察利用RNA
干扰技术抑制ATM-chk2通路后对细胞衰老的影响及淫羊藿苷的干预作用是否
发生变化。
1材料与方法
1.1实验材料
1.1.1 实验动物 采用SD大鼠,由复旦大学科学部实验室提供,分别随机选
择4个月龄、12个月龄、20个月龄和28个月龄各10只。4组SD大鼠的体重、
身长、活跃情况均无显著性差异,具有可比性。
1.1.2 所用试剂 ATM,cdc25c,cdc2,cdc25A,c-Abl 均为SANTA 公司提
供,Cdk2为Biolegend公司生产。
1.2方法
分别取4个月龄、12个月龄、20个月龄和28个月龄大鼠的骨髓组织进行
ATM-chk2通路的观察,并对其结果进行分析。
1.2.1 ATM-chk2通路的研究 ①骨髓组织的制备:分别将4组大鼠脱颈椎处
死。并采用75%的乙醇进行消毒,置于方盘内,拨开大鼠的大腿皮肤,分离肌肉,
剪开双侧股骨颈,采用pH值为7.2 的PBS液冲洗,置于已经灭菌的EP管内。
②骨髓细胞涂片:采用SP免疫组化法,显色剂为DAB。一抗浓度为1∶100。
采集取骨髓细胞进行涂片,采用丙酮做固定液,固定15 min。再经二次蒸馏水进
行清洗,采用pH值为7.2的PBS液少量多次缓缓清洗,再经浓度为3%的双氧
水浸泡以阻断内源性过氧化物酶。在采用二次蒸馏水、pH=7.2值的PBS液重复
上次的清洗操作。再采用正常羊血清工作液37℃封闭10 min,滴加一抗,于4℃
冰箱中过夜孵育。第2日滴加二抗,于37℃培养箱中孵育30 min,经PBS溶液
冲洗3次,每次5 min;冲洗后加DAB显色液,再用PBS溶液冲洗3次,每次
5 min;滴加苏木素染色10 s,待流水返蓝,进行常规脱水,透明,干燥,封片。
1.3 观察指标
在显微镜下对阳性细胞进行计数并统计阳性细胞率。于100倍光学显微镜下
观察五个视野中的蛋白阳性表达率,取均值。
1.4 统计学处理
采用SPSS16.0统计学软件进行分析,计量资料采用方差分析,以P<0.05
为差异有统计学意义。
2 结果
2.1 不同组别大鼠的ATM基因表达情况比较
4个月龄、12个月龄、20个月龄和28个月龄SD大鼠的ATM基因表达随
着月龄增加,呈逐渐下降趋势,不同月龄大鼠间行方差分析,差异具有统计学意
义(P < 0.05)。
2.2 不同组别大鼠的ATM-chk2通路基因蛋白表达情况比较
4个月龄、12个月龄、20个月龄和28个月龄SD大鼠的ATM-chk2通路基
因蛋白呈逐渐上升趋势,组间行方差齐性检验,差异具有显著性(P < 0.05)。
3讨论
衰老,一般是指生命周期中随增龄而发生的、渐进的、受多种因素影响的、
全身复杂的形态结构与生理功能不可逆的退行性变化[2]。世界性的人口老龄化
趋势,使如何延缓衰老、提高老年人生存质量不仅有医学、生物学等方面的意义
[3],同时也有更为广泛的社会意义。因此延缓衰老、防治脑老化的研究成为目
前老年医学界主要课题之一,正日益引起医学界的广泛重视[4]。衰老是机体经
长期发展,渐进累积而成,其为机体最复杂的生物过程之一[5]。机体衰老时,
其各种组织、系统、不同层次都发生相应的变化,因此从不同层面去研究衰老的
过程,从而揭示衰老的规律具有更为重要的价值[6]。
DNA损伤造成的基因组不稳定性是衰老发生过程中的核心环节[7]。以
ATM-chk2通路为主的DNA损伤检验点是调控DNA损伤修复最为重要的关卡,
与衰老的发生关系密切[8]。我们前期研究从细胞水平、低等动物、哺乳动物三
个层次发现ATM-chk2通路及其基因蛋白表达对衰老存在一定的影响。同时前期
利用基因芯片技术发现老年小鼠DNA损伤反应相关基因表达上调,但ATM基
因表达下调[9]。细胞周期DNA损伤的检测主要依赖于细胞周期监测点信号通路
来完成,其中毛细血管扩张共济失调突变基因(ATM基因)及其编码的产物蛋
白激酶在该通路中起着重要的作用[10,11]。ATM基因通路是DNA修复中十分
重要的调控网络[12]。ATR-chk2通路信号转导路径:DNA损伤诱导ATR激活下
游chk1,chk1主要磷酸化Cdc25C[13],通过Cdc2调控G2/M期;也介入ATM-chk2
下游通路,磷酸化Cdc25A,参与S期损伤检测调控[14,15]。
本研究资料中,4个月龄、12个月龄、20个月龄和28个月龄SD大鼠的ATM
基因表达随着月龄增加,呈逐渐下降趋势,不同月龄大鼠间比较,差异具有统计
学意义(P < 0.05);ATM-chk2通路基因表达呈逐渐上升趋势,组间比较差异具
有统计学意义(P < 0.05)。综上所述,ATM基因表达及ATM-chk2通路基因蛋白
表达水平与大鼠月龄直接相关。
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